|
УДК 579.266:574
РАСПРЕДЕЛЕНИЕ
ПРИЗНАКОВ ДЕГРАДАЦИИ УГЛЕВОДОРОДОВ СРЕДИ ГЕТЕРОТРОФНОЙ МИКРОФЛОРЫ, ВЫДЕЛЕННОЙ
ИЗ ПОЧВЫ И НЕФТЕШЛАМОВ
Мельников Д.А. – аспирант
Карасева Э.В. – к. б. н., профессор
Кубанский государственный университет
В
работе изучалась способность к росту гетеротрофных бактерий на н-алканах и
ароматических углеводородах. Установили, что разнообразие спектров потребляемых
углеводородов (коэффициент Евклидова разнообразия) у микрофлоры почвы, не
загрязненной нефтепродуктами, практически не отличается от микрофлоры грунта в
процессе микробиологической очистки. Тот же показатель разнообразия спектров
потребляемых углеводородов равняется нулю у микрофлоры нефтешламов до
обработки.
Известно, что черноземные почвы отличаются
высокой концентрацией микроорганизмов [1], нефтешламы также характеризуются
присутствием в них гетеротрофных микроорганизмов [2]. Очевидно, что при
исследовании процесса биодеградации нефтепродуктов в различных объектах
необходимо изучение разнообразия трофических возможностей у гетеротрофной микрофлоры
по отношению к индивидуальным углеводородам – компонентам поллютантов. Это
поможет понять принципы функционирования углеводородокисляющих сообществ.
Целью данной работы стала оценка и сравнение
разнообразия спектров потребляемых углеводородов у микроорганизмов, выделенных
из нефтешламов, почвы и грунта на завершающем этапе биоремедиации. В своем
исследовании мы стремились выделить как можно больше изолятов гетеротрофных
бактерий с учетом концентрации бактерий в высеве и исследовать спектр
потребляемых углеводородов у выделяемой микрофлоры. На основании полученных
данных выделили минимальную группу углеводородов, которая позволяет оценить
углеводородокисляющую направленность штамма.
ОБЪЕКТЫ
И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Микроорганизмы выделяли из чистой почвы
(чернозема), нефтешлама на завершающей стадии детоксикации и двух образцов
нефтешламов, не подвергавшихся очистке. Нефтешлам №1 представлял собой твердую
черную массу, концентрация нефтепродуктов 345 г/кг, срок хранения более 40 лет,
отобран из амбара накопителя. Нефтешлам №2 отобран из нефтеловушки, он содержал
нефтяные отходы, полученные при зачистке резервуаров. Концентрация
нефтепродуктов в данном образце составила 340 г/кг.
Нефтешлам на завершающем этапе очистки (в
дальнейшем грунт) отобран с площадки биологической очистки нефтешлама,
обрабатываемого по технологии центра "Биотехнология" КубГУ. К моменту
отбора пробы он представлял собой грунт с остаточным содержанием углеводородов – 34,8 г/кг. Принципы
технологии детоксикации описаны в работе [3]. В очищаемый шлам в процессе
биоремедиации вносили биогенные элементы, структурирующие вещества,
регулировали водный режим.
Содержание нефтепродуктов в нефтешламах
определяли флюориметрически на "Флюорат 02-3М" по стандартной
методике согласно ПНДФ 16.1.21-98 КХА почв МВИ массовой доли нефтепродуктов в
пробах почв на анализаторе жидкости "Флюорат 02".
Выделение и количественный учет
микроорганизмов проводили методом кратных разведений почвы (нефтешлама,
грунта), суспендированной в физиологическом растворе. Четыре грамма почвы
(нефтешлама, грунта) разводили в 40 мл физиологического раствора. Далее по
стандартной методике производили десятикратные разведения, а начиная с
четвертого разведения для нефтешламов (грунта) и с пятого для почвы – двукратные разведения.
Соответственно посевы (0,1 мл почвенной суспензии) производили из последнего
десятикратного разведения и двух первых двукратных разведений на стандартный
питательный агар для гетеротрофных микроорганизмов. Такой способ разведений дал
возможность выделить в чистой культуре оптимальное количество изолятов для
дальнейших исследований.
Для оценки способности к росту на различных
углеводородах производили посев чистых культур штрихом на плотную минеральную
среду с углеводородами. Состав плотной минеральной среды: нитрат калия – 4,0 г,
однозамещенный фосфат калия – 0,6 г, двузамещенный фосфат натрия (двенадцативодный) –
1,4 г, сульфат магния –
0,8 г, агар – 20 г, вода (водопр.) до 1 л. В качестве единственного источника
углерода и энергии использовали индивидуальные н-алканы ряда гексан –
октадекан, бензол (Benz) и его производные – 1,2,4-триметилбензол (псевдокумол
– Psk), бутилбензол (b-Benz), о-ксилол (o-Xyl), толуол (Tol). Также производили
посевы выделенной микрофлоры на минеральную среду с хлороформенным экстрактом
соответствующего объекта (нефтешламы и грунт). Так как чистая почва не
содержала нефтепродукты, микроорганизмы, выделенные из нее, культивировали на
минеральной среде с сырой нефтью, взятой в качестве модельного поллютанта. Все
субстраты вносили в расплавленную среду в концентрации 0,2 % (об). Чашки с
легкими углеводородами (н-алканы ряда гексан – додекан, бензол и его
производные) помещали в закрытый эксикатор, на дно которого наливали 10 мл
углеводорода. Нафтид
нефтешлама вносили в плотную минеральную среду в бензольной эмульсии.
Расплавленную среду нагревали и выдерживали в течение одного часа на кипящей
водяной бане в вытяжном шкафу для удаления растворителя и периодически
встряхивали. В результате получали дисперсию нефтепродукта в плотной
минеральной среде. Культивировали при комнатной температуре в
течение 7 суток. Учитывали результаты по системе "+" (наличие роста)
и "-" (отсутствие роста).
Для группировки признаков деградации
углеводородов в зависимости от качественных особенностей спектра потребляемых
углеводородов использовали многомерное шкалирование, модуль (PROXSCAL,
порядковая модель с разрешением связанных наблюдений) программы SPSS 11.5 for
Windows. В качестве дистанции между объектами использовали Евклидову меру для бинарных
данных.
Для измерения взаимосвязи между количеством
деградируемых углеводородов и способностью к росту на поллютанте использовали
тест хи-квадрат и коэффициент неопределенности в качестве меры связи. Анализ
провели в программе SPSS 11.5 for Windows.
Для измерения разнообразия выделенной
микрофлоры с учетом степени сходства индивидуальных характеристик роста штаммов
на различных углеводородах использовали коэффициент Евклидова разнообразия (EDC
- Euclidean diversity coefficient) [4]. Формула коэффициента Евклидова разнообразия:
,
где
p – доли i-того и j-того фенотипа, – дистанция между i-тым
и j-тым фенотипом, измеряемая как
,
где
– мера
сходства между фенотипами. В данном исследовании использовали следующую меру
сходства: отношение количества совпадающих признаков у пары штаммов к общему
количеству признаков –
,
где
в стандартной нотации для бинарных данных a (1,1), b (1,0), c (0,1),
d (0,0).
РЕЗУЛЬТАТЫ
И ОБСУЖДЕНИЕ
Для выделения чистых культур
углеводородокисляющих микроорганизмов и оценки роли гетеротрофных
микроорганизмов в процессах деградации углеводородов проводили исследование
содержания микрофлоры данной группы в чистой почве, двух образцах нефтешлама и
образца грунта на завершающем этапе биоремедиации, содержащего остаточный
нафтид нефтешлама. Изоляты, выделенные из разных объектов, приведены в таблице
1. Для микрофлоры, выделенной из нефтешлама №1 и №2, было характерно отсутствие
углеводородокисляющих микроорганизмов в исследуемом разведении. Микрофлора,
выделенная из почвы и грунта, характеризовалась значительно большей долей
изолятов, способных расти на углеводородах. Среди 85 изолятов, выделенных из
грунта, было обнаружено 47 фенотипов, которые различались по спектру
потребляемых углеводородов.
Таблица 1 – Распределение изолятов,
выделенных из чернозема, и нефтешламов в зависимости от разведения и среды
выделения
Объект |
Разведение
1 |
Разведение
2 |
Разведение
3 |
Почва |
35 |
23 |
11 |
Нефтешлам
№1 |
20 |
0 |
0 |
Нефтешлам
№2 |
19 |
0 |
0 |
Грунт |
39 |
31 |
15 |
Примечание:
для нефтешламов и грунта разведение 1 – в раз, разведение 2 – в раз, разведение 3 – в раз, для почвы
разведение 1, 2 и 3, соответственно, в , , раз.
Из 69 изолятов, выделенных из почвы, было
описано 35 фенотипов, отличающихся по спектру потребляемых углеводородов. Среди
микроорганизмов, выделенных из почвы, 17,4 % были способны утилизировать сырую
нефть, а среди выделенных из грунта 38,8 % поддерживали рост на остаточном
нафтиде данного грунта. Такое распределение можно объяснить тем, что почва не
была загрязнена нефтью, а грунт содержал собственно тот нафтид, на котором
испытывали рост выделяемых микроорганизмов. Тем не менее можно признать
значительной долю нефтеокисляющих микроорганизмов, присутствующих в чистой
почве.
Особенности распределения уникальных
фенотипов (по признакам роста на углеводородах) среди микроорганизмов,
выделенных из разных разведений из почвы и грунта, показали некоторое
несовпадение с моделью кратных разведений. В случае почвы из первого разведения
(табл. 1) выделено 88,5 % изолятов, уникальных по фенотипу, из второго – 91,3
%, а все изоляты, выделенные из третьего разведения имели уникальные фенотипы.
Под уникальным фенотипом подразумевали спектр потребляемых углеводородов, не
встретившийся более чем у одного штамма, выделенного со всех трех разведений.
Для микрофлоры, выделенной из грунта, наблюдали аналогичную картину: из первого
разведения выделено 84,6 % изолятов, уникальных по фенотипу, из второго – 67,7
%, из третьего разведения 80,0 % изолятов имели уникальные фенотипы. Эти данные
позволяют говорить об эффекте разведения, что, впрочем, согласуется с
современными представлениями в области почвенной микробиологии [5].
Распределение показателя роста на нефти
(нефтешламе) среди изолятов с различным количеством потребляемых углеводородов
представлено на рисунке 1 для почвы и рисунке 2 для грунта.
Рисунок 1 – Распределение изолятов,
выделенных из почвы, в зависимости от количества потребляемых углеводородов и способности к росту на нефти
![](image013.jpg)
Рисунок 2 – Распределение изолятов,
выделенных из грунта, подвергнутого биоремедиации, в зависимости от количества
потребляемых углеводородов и способности к росту на остаточном нафтиде
На основании полученных данных предположили,
что чем большее количество углеводородов способен потреблять штамм, тем
вероятнее обнаружить способность к росту на нефтепродукте-поллютанте.
Для выяснения такой взаимосвязи применили
тест хи-квадрат для таблицы сопряженности, где одна переменная – это
способность расти на нафтиде грунта, или нефти в случае почвы, а другая –
количество углеводородов, на которых росли штаммы. Силу взаимосвязи оценивали с
помощью коэффициента неопределенности, результаты представлены в таблице 2.
Таблица 2 – Статистические показатели для
таблицы сопряженности "рост на нефтепродукте-поллютанте" – "количество
потребляемых углеводородов"
В обоих случаях получены высокозначимые
уровни точности, что позволяет говорить о наличии связи между количеством
потребляемых углеводородов и способностью расти на нефтепродукте-поллютанте.
Важно отметить, что использованные в данном исследовании углеводороды
составляют лишь незначительную часть веществ нефтепродуктов, так как отдельные
вещества в составе нефтепродуктов редко имеют массовую долю более 1 %.
Максимально возможное значение коэффициента неопределенности для почвы отражает
возможность предсказать рост штамма на данной нефти с максимальной точностью,
основываясь на знании спектра потребляемых углеводородов. В случае грунта
получено меньшее значение коэффициента неопределенности, и можно предположить,
что используемый набор углеводородов недостаточно отражает состав остаточного
нафтида. Тем не менее и здесь наличие связи подтверждено достаточно
убедительно.
Для отбора штаммов по способности к росту на
углеводородах имеет смысл ограничить набор субстратов, на которых проводится
исследование способности к росту. Рост на различных углеводородах в исследуемых
выборках изолятов был распределен асимметрично. Наиболее часто встречался рост на н-алканах (от 14,5 %
до 33,3 % изолятов для почвы и от 9,4 % до 45,9 % изолятов для грунта),
значительно реже на ароматических углеводородах (от 0,0 % до 4,3 % изолятов для
почвы и от 5,9 % до 9,4 % изолятов для грунта). Для поиска
минимальной группы субстратов, которая позволяла бы оценивать
углеводородокисляющую направленность штамма, использовали метод многомерного
шкалирования. Результаты для штаммов, выделенных и чернозема и грунта,
представлены на рисунках 3 и 4. В процедуре многомерного шкалирования были
получены следующие значения "стресса": для почвы Stress-I = 0,090, Stress-II
= 0,195, S-Stress = 0,023, для грунта Stress-I = 0,079, Stress-II
= 0,151, S-Stress = 0,010. Такие значения "стрессов"
говорят о хорошем качестве отображения взаимосвязей между переменными в пространстве
меньшей размерности.
В обоих случаях почти все признаки были
распределены довольно хаотично, только н-алканы ряда тридекан – октадекан и
ароматические углеводороды образовали отдельные группы. Это означало, что
большинство штаммов имели по данным группам углеводородов похожие ответы, и
можно рассматривать данные группы углеводородов как единый показатель (важно
подчеркнуть вероятностную суть такого показателя).
![](image014.jpg)
Рисунок 3 – Распределение показателей роста
на различных углеводородах, полученное методом многомерного шкалирования, для
штаммов, выделенных из почвы
![](image015.jpg)
Рисунок 4 – Распределение показателей роста
на различных углеводородах, полученное методом многомерного шкалирования, для
штаммов, выделенных из грунта, подвергнутого биоремедиации
Так как н-алканы ряда тридекан – октадекан
наименее летучие и нетоксичные среди всех использованных углеводородов (то есть
наиболее удобные для исследовательской работы), и рост хотя бы на одном из них
был обнаружен практически у всех углеводородокисляющих изолятов, мы попытались
выяснить, можно ли использовать показатели роста именно на этих углеводородах
для оценки возможности роста штаммов на других углеводородах.
Для определения связи между количеством
утилизируемых н-алканов ряда тридекан – октадекан и количеством потребляемых
углеводородов (н-алканы ряда гексан – додекан и ароматические углеводороды)
использовали коэффициент корреляции рангов Спирмана. Получили следующие
значения: R (почва) = 0,40 (p = 0,001), R (грунт) = 0,66 (p
< 0,001). Такие значения коэффициента корреляции позволяют сделать вывод
о возможности использования н-алканов ряда тридекан – октадекан при первичном
скрининге углеводородокисляющей микрофлоры. Отсутствие роста на данных
углеводородах позволяет исключить штаммы с заведомо малым спектром потребляемых
углеводородов на ранних этапах отбора штаммов.
Для оценки и сравнения разнообразия спектров
потребляемых углеводородов у микрофлоры, выделенной из разных источников, было
бы логичным использовать какой-либо интегральный показатель. Мы остановили свой
выбор на коэффициенте Евклидова разнообразия (EDC), так как этот коэффициент
слабо зависит от объема исследуемой выборки и позволяет учесть степень различий
между объектами, которые характеризуются множеством показателей. Были получены
следующие значения: для почвы EDC = 0,12 и для грунта EDC = 0,18 (полученные
значения составляют примерно треть от максимально возможных при таких объемах
выборок штаммов). EDC для нефтешламов №1 и №2, соответственно, равняется 0,00.
Эти данные позволяют утверждать, что по характеристике разнообразия трофических
возможностей по отношению к углеводородам у гетеротрофной микрофлоры грунт на завершающем
этапе биоремедиации не уступал чистой почве и превосходил нефтешламы до
очистки.
Благодарности: математическая обработка результатов сделана
при содействии профессора кафедры генетики и микробиологии КубГУ доктора
биологических наук Волчкова Ю.А. и кандидата биологических наук, доцента Тюрина
В.В.
Список литературы
1. Микроорганизмы и
охрана почв / Под ред. Д.Г. Звягинцева. – М.: Изд-во МГУ, 1989. – 206 с.
2. Никитина Е.В. Особенности
распределения и физиологического состояния микроорганизмов нефтешлама – отхода
нефтехимического производства / Е.В. Никитина, О.И. Якушева, С.А. Зарипов, Р.А.
Галиев, А.В. Гарусов, Р.П. Наумова // Микробиология. – 2003. – Том 72. – № 5. –
С. 699–706.
3. Рукавцов Б.И. Принципы
микробиологической утилизации нефтешламов / Б.И. Рукавцов, Э.В. Карасева, Т.Ю.
Нечитайло, И.Е. Гирич, Р.И. Смоляр // Экологические проблемы биодеградации
промышленных, строительных материалов и отходов производств: III Всероссийская конференция, сборник
материалов. – Пенза, 2000. – С. 129–130.
4. Champely
Stephane and Chessel Daniel Measuring biological diversity using Euclidean metrics
// Environmental and Ecological Statistics. – 2002. – №9. – p. 167–177.
5. Полянская Л.М. Микронавески
ризосферной почвы и лабораторные артефакты / Л.М. Полянская, М.Х. Оразова, О.А.
Бурканова, Д.Г. Звягинцев // Микробиология. – 2000. – Том 69. – №4. – С. 581–585.
|